摘要:建立了聚亚苯基砜(PPSU)奶瓶4,4′-联苯二酚迁移量的超高效液相色谱-串联质谱分析方法(UPLC-MS/MS)。样品用50%乙醇水溶液(食品模拟物)进行迁移试验,采用C18色谱柱分离,以超纯水和甲醇为流动相梯度洗脱,通过电喷雾电离源(ESI)负离子模式和多反应监测(MRM)采集扫描进行定性和定量检测,外标法定量。在优化条件下,目标物在5~200ug/L范围内线性关系良好,相关系数(r2)大于0.9999,检出限和定量下限分别为1.5ug/L和5ug/L。方法的基质效应为95.8%~114%,加标回收率为95.2%~105%,相对标准偏差(RSD)为1.0%~1.7%。该方法快速、准确且灵敏度高,适用于PPSU奶瓶4,4′-联苯二酚低迁移量的测定。 关键词:聚亚苯基砜(PPSU)奶瓶;4,4′-联苯二酚;迁移量;超高效液相色谱-串联质谱 塑料奶瓶作为婴幼儿食品接触材料,其安全性备受社会关注[1-3]。“双酚A奶瓶”事件后,聚碳酸酯(PC)奶瓶很快就退出了我国市场,聚亚苯基砜(PPSU)奶瓶逐步成为消费者首选[4-6]。在PPSU塑料制品的合成过程中需要用到一种重要的单体——4,4′-联苯二酚,它是一种类激素物质,具有一定的雌激素活性和抗雄激素活性[7-10]。鉴于残留单体向食品迁移的问题在过去几十年中时有发生[11-12],欧盟[13]、韩国[14]、中国[15-16]等国家对食品接触PPSU塑料制品都进行了4,4′-联苯二酚迁移限量规定。国家标准GB 4806.6-2016《食品安全国家标准食品接触用塑料树脂》规定了4,4′-联苯二酚向食品模拟物的特定迁移限量为6 mg/kg。 然而,在限量规定实施后的几年内,4,4′-联苯二酚一直存在检测方法缺失的情况。2020年,广东省团体标准T/GDBZ 002-2020《食品接触材料及制品4,4′-联苯二酚迁移量的测定》正式发布实施,采用液相色谱-紫外检测法解决了4,4′-联苯二酚迁移量检测的无标准可依的问题,方法的定量限为0.2 mg/L[17]。同年,中国专利文献公开了一种PPSU奶瓶中4,4′-联苯二酚和4,4′-二氯二苯砜迁移量的检测方法,检测方法同样是采用液相色谱-紫外检测法[18]。 本工作采用超高效液相色谱-串联质谱法(UPLC-MS/MS)检测4,4′-联苯二酚迁移量,相比于液相色谱-紫外检测法具有更好的定性、定量检测能力,将迁移物的检测能力提高至更低浓度水平。 1实验部分 1.1 仪器和试剂 超高效液相色谱-串联质谱仪为SCIEX Triple Quadtm 6500+(上海爱博才思分析仪器贸易有限公司);Secura225D-1CN电子天平(德国赛多利斯公司);DKN612C恒温箱(日本Yamato公司);Milli-Q超纯水仪(美国密理博公司);0.22 um微孔水膜(上海安谱公司);4,4′-联苯二酚标准品(纯度99.9%,广州佳途科技);甲醇、甲酸、乙醇、乙酸铵(HPLC级,厦门绿茵试剂);25%氨水(分析纯,厦门绿茵试剂);实验用水均为超纯水。 1.2 标准溶液的配制 标准储备液(100 mg/L):准确称取4,4′-联苯二酚标准品10 mg,用甲醇溶解并定容到100 mL容量瓶中,摇匀,制成质量浓度为100 mg/L标准储备液。-20℃保存,有效期三个月。 标准中间溶液:准确移取0.05 mL,0.1 mL,0.2 mL,0.5 mL,1mL和2mL的标准储备液于10 mL容量瓶中,用甲醇定容至刻度,摇匀,配制成浓度分别为0.5 mg/L,1mg/L,2mg/L,5mg/L,10 mg/L和20mg/L的标准中间溶液。 标准工作溶液:分别准确移取0.10 mL标准中间溶液于10 mL容量瓶中,用50%乙醇(体积分数,下同)定容至刻度,摇匀,配制成浓度分别为5ug/L,10ug/L,20ug/L,50ug/L,100ug/L和200ug/L的标准工作溶液。 1.3 迁移试验 按照GB 31604.1和GB 5009.156的要求,往PPSU奶瓶中加入一定体积(标称容量)的食品模拟物,用保鲜膜封口,随后至于恒温箱中进行迁移试验,设定温度70℃,时间2h。奶瓶为重复使用产品,每个试样需进行三次迁移试验,每次均使用一份新的食品模拟物,取第三次迁移试液10 mL,用0.22 um微孔水膜过滤,得到待测迁移液。同时做平行试验和空白试验。 1.4 色谱条件 色谱柱:ACQUITY UPLC®BEH C18 (1.7μm,2.1 mm×100 mm);柱温:35 ℃;流动相A为超纯水,流动相B为甲醇,进行梯度洗脱,洗脱程序见表1;流速:0.2 mL/min;进样体积:1 µL。 表1梯度洗脱程序 Table 1 Gradient elution program of UPLC Time/min | A/% | B/% | 0 | 80 | 20 | 2 | 10 | 90 | 5.1 | 80 | 20 | 6 | 80 | 20 | 1.5 质谱条件 离子源模式:电喷雾离子源(ESI),采用负离子扫描模式;离子源温度:350℃;去簇电压:-115 eV;接口电压:-10 eV;离子喷雾电压:-4500 V;帘气:0.207 MPa;雾化气:0.379 MPa;加热气:0.379 MPa;选择多反应监测(MRM)数据采集模式。 2 结果讨论 2.1 定性、定量方式的选择 用质量浓度为50 ug/L的4,4′-联苯二酚(溶剂为50%乙醇)进行全扫描,得到总离子流图后进行二级质谱数据采集,并对所得到的子离子进行逐个优化,优化后质谱参数详见表2,二级质谱见图1。最后选择多反应离子监测(MRM)数据采集模式,选取 184.1(m/z)作为定量离子,156.1(m/z)和120.6(m/z)作为定性离子。 表2质谱参数 Table 2 Parameters of the mass spectrum Precursor ions (m/z) | Fragmentation ions (m/z) | Collision Energy/eV | 184.9 | 184.1 | -30 | 184.9 | 156.1 | -37 | 184.9 | 120.6 | -34 | 
1图1 4,4′-联苯二酚二级质谱图 Figure 1 Secondary mass spectrogram of 4,4′-dihydroxybiphenyl 2.2 离子源温度优化 离子源对质谱的影响非常大,合适的离子源温度可以更好的去溶剂化,得到一个高的离子化率,最终提高灵敏度,因此这里对离子源温度进行了优化。分别在250、350、450、550和650℃对10 ug/L的4,4′-联苯二酚标准溶液进行测试,对比峰面积,结果如图2所示。通过对比可以得到在350℃的离子源温度下仪器的响应值是最好,因此后面的测试中离子源温度选用的是350℃。 
图2不同离子源温度的峰面积对比图 Figure 2 A comparison of peak areas of 4,4′-dihydroxybiphenyl with different ion source temperature 2.3 流动相优化 UPLC-MS/MS检测时经常在流动相加入甲酸、乙酸铵或氨水提高响应,这里分别使用0.1%甲酸、纯水、5mM乙酸铵和0.01%氨水作为流动相A相,结果如图3所示。当使用纯水作为流动相A时,仪器响应最强。因此选用超纯水和甲醇作为流动相。 
图3a) 不同流动相的色谱图;b) 不同流动相的峰面积对比图 Figure 3 Chromatograms (a) and a comparison of peak areas (b)of 4,4′-dihydroxybiphenylin different mobile phase 2.4 方法的线性范围、检出限及定量下限 在最优的色谱和质谱条件下对4,4′-联苯二酚标准工作溶液进行测定,以4,4′-联苯二酚的质量浓度(x,ug/L)为横坐标,色谱峰面积(y)为纵坐标,绘制标准溶液回归曲线。4,4′-联苯二酚标准溶液工作曲线在5~200 ug/L范围内线性关系良好,线性方程y=8.99×104x + 4.07×104,线性相关系数R2>0.9999。 以加标试验来进行方法灵敏度的确定,分别以3倍和10倍信噪比(S/N)对应的加标水平为检出限和定量下限。经试验4,4′-联苯二酚的检出限和定量下限为1.5 ug/L和5 ug/L。 2.5 回收率与相对标准偏差 分别在食品模拟物(50%乙醇)种添加低、中、高浓度的标准工作溶液,配制成4,4′-联苯二酚质量浓度分别为5、10和50 ug/L的加标食品模拟物,然后按照GB 31604.1和GB 5009.156的要求加入到样品中进行迁移试验,温度70℃,时间2h。各浓度设置6个平行,然后测定加标回收率。结果如表3所示,该试验加标回收率为95.2%~105%,RSD小于2%,说明方法准确度高,符合方法要求。 表3加标回收率及相对标准偏差 Table 3 Recoveries and RSDs of 4,4′-dihydroxybiphenyl Spiked(ug/kg) | Average concentration(ug/kg) | Recovery(%) | RSD(%) | 5 | 4.76 | 95.2 | 1.2 | 10 | 10.4 | 104 | 1.7 | 50 | 52.6 | 105 | 1.0 | 2.6 基质效应 基质效应是指在样品测试过程中,目标物以外的其它物质直接或者间接影响质谱检测的现象。考虑到迁移试验时会使用不同的食品模拟物,因此需要进行基质效应的考察。这里分别以4%乙酸(体积分数,下同)、纯水和10%乙醇作为溶剂,配制了10 ug/kg的4,4′-联苯二酚标准溶液,在上述色谱和质谱条件下进行测试,然后与50%乙醇为溶剂的4,4’-联苯二酚标准溶液对比,每种基质重复测试五次,取平均值。如图4所示,不同基质对保留时间和分离程度几乎没有影响,经过与50%乙醇的结果对比计算得到基质效应在95.8~114%,表明其它食品模拟物对4,4’-联苯二酚的检测影响较小,本方法可用于4,4′-联苯二酚迁移量的定量检测。 
图4a)不同基质的色谱图;b)不同基质的峰面积对比图 Figure 4 Chromatograms (a) and a comparison of peak areas(b) of 4,4′-dihydroxybiphenyl in different substrate 2.7 实际样品测试 对市售三种品牌的PPSU奶瓶进行测试,按照上述条件进行迁移试验,每种品牌样品平行测定两个,同时做空白试验。结果表明三种品牌在使用50%乙醇作食品模拟物时均未检出4,4′-联苯二酚。 3 结论 本研究建立了聚亚苯基砜(PPSU)奶瓶中4,4′-联苯二酚的超高效液相色谱-串联质谱(UPLC-MS/MS)的测定方法。4,4′-联苯二酚在5~200 ug/L范围内线性关系良好,检出限为1.5 ug/L,加标收率为95.2%~105%,RSD小于2%。该方法具有定性准确、灵敏度高、精密度好等优点,有望在食品接触材料有害物质风险监测工作中推广应用。 参考文献 [1] Shi J, Luo C, Liu J. China Rubber/Plast.Tech.and Equip.(施均,罗婵,刘峻. 橡塑技术与装备),2015,41(16):34-35+54. [2] Xie W J, Dai H, Jia F, Chen W P, Hu X L, Li P S, Chen R M, Hou X C, Wu Y L. Chin. J. Food Hyg.(谢文缄,戴航,贾芳,陈伟萍,胡晓露,李珮斯,陈瑞敏,侯向昶,吴玉銮.中国食品卫生杂志),2015,27(S1):14-18. [3] EckardtM,Greb A, J. Simat T. Food Addit. &Contam.:Part A,2018,35(7):1421-1437. [4]Li J J, Li L J, Xu H C, Zhao Z Q, Gao B, Liu K. J. Environ. And Health(李君君,李力军,徐惠诚,赵增强,高彬,刘琨.环境与健康杂志),2012,29(04):379-382. [5]Chen S, Zhu Z W, Li Q, Zhang W Z. Modern Food(陈沙,朱作为,李晴,张文中.现代食品),2020,(10):148-152. [6] Chen X, Zhao J Q, Yuan Y C, Liu S M, Cao M, Ruan W H, Zhang M Q. Guangdong Chem. Industry(陈骁,赵建青,袁彦超,刘述梅,曹明,阮文红,章明秋.广东化工),2013,40(18):66-67+49. [7] Nishihara T, Nishikawa J, Kanayama T, Dakeyama F, Saito K, Imagawa M, Takatori S, Kitagawa Y, Hori S, Utsumi H. J. Health Science.2000,46(4):282-298. [8] Olsen C M, Meussen-Elholm E T M, Samuelsen M, Holme J A, Hongslo J K.Pharmacology& Toxicology.2003,92:180–188. [9] Delgado-Blanca I, Llorent-Martínez, E J, Ruiz-Medina A, Pilar O B. Food Addit. &Contam.:Part A,2020, 37(1):174-182. [10] Groh KJ, Backhaus T, Carney-Almroth B, GeuekeB,Inostroza PA, Lennquist A, Leslie HA, Maffini M, SlungeD,Trasande L, Warthurst A M, MunckeJ.SciTotalEnviron. 2019,651:3253–3268. [11] Bang D Y, Kyung M, Kim M J, Jung B Y, Cho M C, Choi S M, Kim Y W, Lim S K, Lim D S, Won A J, Kwack S J, Lee Y, Kim H S, Lee B M. Compr.Rev. Food Sci. Food Saf.2012,11(5):453–470. [12] Kumar P. Indian J. Pediatr. 2018,85:384–389. [13]CEN/TS13130-18-2005. Determination of 1,2-dihydroxybenzene, 1,3-dihydroxybenzene, 1,4-dihydroxybenzene, 4,4?-dihydroxybenzophenone and 4,4?dihydroxybiphenyl in food simulants. European Committee for Standardization. [14] Li N, Wang D, Zhang X M, Zhu N, Wang H J, Zhuang Y, Zhu R. ModernFood(李宁,王丹,张小明,朱南,王浩杰,庄棪,朱荣.现代食品),2020,17:174-178. [15] GB 4806.6-2016. Plastic Resins for Food Contact. National Standards of the People's Republic of China(食品接触用塑料树脂,中华人民共和国国家标准). [16] Zhao L, Li W H, Li J J, Sun D Z, Zuo Y. The Food Industry(赵镭,李文慧,李洁君,孙多志,左莹. 食品工业),2021,42(04):471-474. [17] T/GDBZ 002-2020. Food Contact Material and Products Determination of Migration of 4,4’-dihydroxybiphenyl. Group Standards of Guangdong(食品接触材料及制品4,4′-联苯二酚迁移量的测定,广东省团体标准). [18] Nanjing Product Quality Supervision and Inspection Institute. China Patent(南京市产品质量监督检验院.中国专利),CN111077255A. [2020-04-28]. |